lunes, 2 de marzo de 2020

PRACTICA 11: ESTREPTOLISINA O LIOFILIZADA

DETERMINACIÓN DEL TITULO DE ANTI-SLO

PRINCIPIO CLÍNICO
La estreptolisina O (SLO), es un purificado procedente del cultivo de estreptococos beta-hemolíticos. Se trata de un producto estandarizado para la determinación cuantitativa del titulo de antiestreptolisina O, por la técnica de inhibición de la hemólisis. 
El carácter inmunogénico de la SLO permite valorar la extensión de una infección estreptocócica, por simple titulación de nivel en suero de anticuerpos anti-SLO. Diluciones crecientes del suero problema se enfrentan con una cantidad constante de SLO, en presencia de una suspensión de hematíes, determinándose la dilución de suero mas alta capaz de inhibir el poder hemolítico de la toxina. La inversa de dicha dilución corresponde al titulo del suero.

OBJETIVO 
Streptococo pyogenes (estreptococo del grupo A beta-hemolítico) es la causada bacteriana más frecuente de faringitis aguda y también origina distintas infecciones cutáneas y sistemáticas. La infección puede acarrear dos secuelas, la fiebre reumática aguda y la glomerulonefritis aguda postestreptocócica.
La mayor parte de las cepas de estreptococos del grupo A también elabora una hemolisinas, la estreptolisina O provoca hemólisis de los hematíes. 
La estreptolisina O tiene carácter antigénico y en la clínica, la técnica serológica mas utilizada para detectar la infección estreptocócica del grupo A, es la titulación de los anticuerpos antiestreptolisina O (ASO) en el suero del ser humano. 

REACTIVOS

  • Estreptolisina O liofilizada

  • Tampón fosfato pH 6,5
  • Suero 
  • Hematíes grupo O ( usamos este tipo de hematíes porque como en su superficie no hay Ag, no habrá problema de que aglutinen)

PREPARACIÓN DE REACTIVOS

  • Para preparar una suspensión de hematíes lavados, debemos diluir 5 ml de suspensión de hematíes en 95 ml de tampón fosfato
  • Para preparar laso dos diluciones de suero de paciente debemos:
    • Para 1/10 : diluir 0,2 ml de suero en 1,8 ml de tampón
    • Para 1/25 : diluir 0,1 ml de suero en 2,4 ml de tampón


PROCEDIMIENTO DEL MICRÓMETRO
Utilizamos placas microtiter con los pocillos en forma de V. Para cada suero diluido necesitamos dos filas de pocillos. La primera fila A será para 1/10 y la segunda fila B será para 1/25. Utilizaremos 10 pocillos, 9 para la realizar la dilución y el último para el control de SLO en el caso A y para el control de hematíes para el caso B.
  • Dispensamos en cada pocillo de la primera fila y de la segunda 50ul de tampón,
  • Añadimos 50ul de la dilución 1/10 en el primer pocillo de la fila A
  • Mezclamos bien, y pasamos 50ul al siguiente pocillo, efectuamos sucesivas diluciones en todos los pocillos, menos en el último que es el control
  • En la fila B, hacemos lo mismo, añadimos en el primer pocillo 50ul de la dilución 1/25 y vamos realizando diluciones en todos los pocillos hasta llegar al 9.
  • Añadimos 25ul de dilución de estreptolisina O en rehidratada a todos los pocillos de la fila A y a todos de la B, menos al ultimo. La estreptolisina O reconstruida tiene una duración de 1 hora.
     
  • Agitamos suavemente e incubamos 15 minutos a 37ºC. Lo tapamos con parafilm, para evitar evaporaciones

  • Transcurrido ese tiempo se añaden 25ul de suspensión de hematíes al 3% a cada pocillo.


  • Agitamos suavemente, dando pequeños golpecitos en la mesa, e incubamos 45 minutos a 37ºC en la estufa. Al pasar los primeros 15 minutos se debe abrir para moverlos y después dejarlos incubar el resto de minutos. 
  •  Dejamos una hora a temperatura ambiente.
LECTURA E INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS
El titulo de antiestreptolisina O corresponde a la inversa de la mayor dilución de suero en cuyo tubo se detecta hemólisis en el sobrenadante.
Nuestro ensayo no salió del todo claro donde estaba la mayor dilución. 
A otros compañeros si. 


Pensamos que el error puede estar en el pipeteo.

Los controles son positivos los dos:
Hematíes: El sobrenadante debe aparecer claro, libre de hemólisis.
Estreptolisina O: El sobrenadante debe presentar una hemólisis evidente.

viernes, 29 de noviembre de 2019

PRÁCTICA 1: RF-LATEX

DETERMINACION CUALITATIVA DE FACTORES REUMATOIDES (FR)

OBJETIVOS
El FR-Látex es  una técnica de aglutinación en porta para detectar cualitativa y semicuantitativa factor reumatoide (FR) en suero humano. 
Las partículas de látex recubiertas con gamma-globulina humana son aglutinadas por factores reumatoide presentes en la muestra del paciente.
Los factores reumatoides son un grupo de anticuerpos dirigidos contra la fracción Fc de las IgG. Intentamos diagnosticas la artritis reumatoide, enfermedad autoinmune que genera Ac frente a componentes del propio organismo. Hace que el complejo Ag-Ac se acumule y lesione las articulaciones.

REACTIVOS






LATEX: Suspensión de partículas en látex cubiertas con gamma-globulina humana, pH 8.2




CONTROL + TAPÓN ROJO: Suero humano con concentración de FR > 30UI/ml
CONTROL - TAPÓN AZÚL: Suero animal



APARATAJE
  • Micro pipeta de 50 ul
  • Puntas de pipeta 
  • Tarjeta con pocillos negros para visualizar el látex
  • Suero fresco 


PROCEDIMIENTO
MÉTODO CUALITATIVO
Con este método queremos observar macroscópicamente la presencia o ausencia de aglutinación. El resultado positivo indicará una concentración de FR igual o superior a 8UI/ml
  1. Antes de empezar a explicar la practica sacamos de la nevera los reactivo para que se vayan atemperando a temperatura ambiente. Para nuestro grupo no quedaba paciente y tuvimos que constituir el suero.
  2. Para preparar el suero mezclamos el componente del bote que nos facilitaron con 1 ml de agua destilada y agitamos vigorosamente hasta que quedo completamente disuelto.
  3. En la tarjeta con los pocillos de color negro, para poder visualizar el látex, añadimos 50ul del suero del paciente 
     
  4. Añadimos una gota de látex y lo mezclamos muy bien con una punta de pipeta, esparciendo toda la solución por toda la superficie del pocillo.
  5. Agitamos con movimientos circulares en la mano durante dos minutos y observamos el resultado


LECTURA E INTERPRETACIÓN 
Observamos que no hay aglutinación, por lo que la presencia de FR es negativo. 
Debería de haber salido positivo, porque usamos un paciente supuestamente positivo, pero nos dio resultado negativo a todos los miembros del grupo. Analizando los posible errores, llegamos a la conclusión que podía ser por:
  1. El látex estaba caducado de junio de este año
  2. Como tuvimos que constituir el suero del paciente, pensábamos que nos habíamos equivocado en la cantidad de agua destilada, pero la revisamos y era correcta. Después pensamos que podía ser porque no lo dejamos reposar durante 30 minutos, y solo lo dejamos durante 10 minutos
  3. Pero llegamos a la conclusión que el problema estaba en que los reactivos están cumplido de bastante fecha, porque nos dieron otro paciente volvimos a repetir la práctica y salió exactamente igual

MÉTODO SEMICUANTITATIVO
Con este método conseguimos el titulo del suero. Definimos Titulo como la máxima dilución de suero en el que existe aglutinación.

PROCEDIMIENTO
  1. Antes de empezar a explicar la practica sacamos de la nevera los reactivo para que se vayan atemperando a temperatura ambiente. Mi grupo utilizo el mismo paciente que constituimos para el método cualitativo.
  2. Añadimos 50ul de solución salina en cada uno de los pocillos de la tarjeta

  3. Añadimos 50ul de muestra del paciente y mezclamos con la solución salina. Volvemos a coger 50ul y lo depositamos en el siguiente pocillo. Seguiremos diluyendo hasta el ultimo pocillo.

   5. Añadimos una gota de látex en cada pocillo y mezclamos con una punta de pipeta
                                   
  
   6. Movemos la tarjeta con movimientos circulares intentado que la solución se extienda por todo el pocillo sin que se derrame
7. Dejamos reposar durante dos minutos, y observamos si se produce aglutinación. 

LECTURA E INTERPRETACIÓN 

Examinamos microscópicamente la presencia o no de aglutinación. En esta ocasión no se produce aglutinación en ningún pocillo, por lo que no existe presencia de FR. Con esta técnica podemos conseguir el titulo de la disolución.
Analizando los posibles errores, coincidimos en los mismo que en la técnica cualitativa, porque hemos usado los mismos reactivos reactivos y la misma muestra de paciente.












martes, 26 de noviembre de 2019

PRÁCTICA 2: WAALER ROSE

DETERMINACION CUALITATIVA DE FACTORES REUMATOIDES (FR)

OBJETIVOS 

El Waaler Rose es una técnica de hemaglutinación en porta para la detección cualitativa u semicuantitativa de FR en suero humano. En esta practica usaremos hematíes de oveja, sensibilizados con IgG de conejo.

SIGNIFICADO CLÍNICO

El factor reumatoide, es un grupo de anticuerpos dirigidos contra la fracción constante de las inmunoglobulinas G. Esta presente en un gran número de desordenes reumáticos, pero su principal interés radica en el diagnostico de artritis reumatoide.

REACCTIVOS

WAALER ROSE: Suspensión de hematíes estabilizados de oveja y sensibilizados con IgG de conejo anti-hematíe de oveja
CONTROL + tapón rojo: Suero humano con una concentración de FR >30UI/ml
CONTROL - tapón azul: Suero animal
Muestra del paciente 


MATERIAL
  • Porta con pocillos blancos, para poder visualizar los hematíes con los que vamos a trabajar.
  • Micro pipeta de 50ul
  • Puntas de pipeta  
PROCEDIMIENTO 
Control 
  1. Sacamos los reactivos de frigo un rato antes de empezar a trabajar, para que se atemperen, y no disminuya la sensibilidad.+ y-
  2. Solo hacemos en control positivo. Sobre el porta depositamos una gota de muestra del paciente
  3.  Añadimos una gota se suspensión Waaler Rose 
  4. Y homogeneizamos con una punta de pipeta intentando extenderlo por toda la superficie del pocillo
  5. Situar el porta sobre una superficie lisa y plana durante dos minutos e inmediatamente después inclinar 45º durante 1 minuto
    Método semicuantitativo: 
Realizamos una dilución de la muestra en solución salina.

  1. En el porta ponemos 50ul de solución salina en cada pocillo
  2. Añadimos 50ul de la muestra del paciente en el primer pocillo, homogeneizamos
  3. Agitamos suavemente el reactivo WR para homogeneizarlo sin romper los hematíes, y añadimos una gota en cada pocillo
  4. Mezclamos con ayuda de una punta de pipeta, procurando extender la mezcla por toda la superficie interior del circulo
  5. Dejamos el porta sobre una superficie plana durante minutos e inmediatamente después la inclinamos unos 45º, dejándola así durante 1 minuto mas.


LECTURA E INTERPRETACIÓN

Examinamos macroscópicamente la presencia o ausencia de aglutinación después de finalizar la reacción.
En nuestro ensaño observamos la aglutinación en el pocillo 1 y 2, lo que indica una concentración de FR . Obtenemos un titulo de 4, porque en el primer pocillo tenemos un factor de dilución 1/2, en el segundo 1/4, 1/8, 1/16, 1/32, 1/64, y siguiendo la definición de titulo " la máxima dilución del suero en el que la aglutinación es positiva".
8x4= 32UI/ml

OBSERVACIONES

Debemos tener en cuenta que los resultados obtenidos con esta método de Waaler Rose no son comparables con los obtenidos mediante el método de FR-Látex. Esta diferencia entre técnicas no refleja diferencias en cuanto a la capacidad de ambas de detectar factores reumatoides

viernes, 22 de noviembre de 2019

PRÁCTICA 3: PCR-LÁTEX

DETERMINACION CUALITATIVA DE FACTORES REUMATOIDES (FR)

PRINCIPIO DEL MÉTODO

La PCR-Látex es una técnica de aglutinación en porta para la detección cualitativa y semicuantitativo de PCR en suero humano. Las partículas de látex recubiertas de anticuerpos anti-PCR humana son aglutinadas por moléculas de PCR presentes en la muestra del paciente.

SIGNIFICADO CLÍNICO

La proteína C-reactiva es una proteína de  fase aguda, presente en el suero de pacientes sanos, la cual se incrementa su concentración en procesos infecciosos bacterianos y virales, tejidos dañados, inflamación y neoplasias malignas. Esta manifestación se produce después de unas horas de desarrollarse la inflamación. 

REACTIVOS 

LÁTEX: Suspensión de partículas de látex cubiertas de IgG de cabra anti PCR-humana
CONTROL + tapón rojo: Suero humano con una concentración de PCR >20mg/l
CONTROL- tapón azul. Suero animal 

MATERIAL

  • Micro pipeta de 50ul
  • Puntas de pipetas
PROCEDIMIENTO 
Control positivo

  1. En el porta colocamos 50ul de suero del paciente control y una gota de PCR-Látex
  2. Mezclamos con una punta de pipeta, procurando extender la mezcla por toda la superficie interior del pocillo
  3. Agitar de manera circular con la mano durante 2 minutos 
Método semicuantitativo
  1. Atemperar los reactivos y muestras, porque si están a temperatura baja la sensibilidad disminuye. 
  2. Dispensar en cada pocillo del porta 50ul de solución salina 
  3. Añadir 50ul de suero de paciente en el primer pocillo, homogeneizar y traspasar al siguiente pocillo 50ul. Realizar la dilución al resto de pocillos
  4. Añadir una gota del reactivo PCR-látex en cada pocillo y mezclar, procurando extender la mezcla por toda la superficie interior del pocillo
  5. Mover de manera circulas en la mano durante dos minutos.

    LECTURA E INTERPRETACIÓN
    Al observar el resultado vemos que la aglutinación se manifiesta hasta el pocillo 2. Como las diluciones han sido con un factor de dilución 1/2, 1/4, 1/8, 1/16, 1/32 y 1/64, el titulo será 4. Para calcular la concentración del PCR-Látex aplicaremos la formula:  
                     6 x titulo de PCR --> 6 x 4 = 34mg/l

          OBSERVACIONES

Una concentración muy elevada de PCR en la muestra del paciente puede dar un resultado falsamente negativo debido al efecto prozona. 

miércoles, 20 de noviembre de 2019

PRÁCTICA 4: ASO-LÁTEX

DETERMINACIÓN CUALITATIVA DE ANTI-ESTREPTOLISINA O (ASO-LÁTEX)

PRINCIPIO DE MÉTODO

El ASO-Látex es una técnica de aglutinación en porta para la detección cualitativa y semicuantitativa de anti-estreptolisina O (ASO) en suero humano. Las partículas de látex recubiertas con estreptolisina O (SLO) son aglutinadas por anticuerpos ASO presentes en la muestra del paciente.

SIGNIFICADO CLÍNICO 
La estreptolisina O es un exoenzima inmunogénico tóxico producido por estreptococos B-hemolíticos de los grupos A, C y G. La cuantificación de anticuerpos ASO se utiliza para el diagnostico y tratamientos de enfermedades como las fiebres reumáticas, glomerulonefritis aguda, y otras infecciones estreptocócicas. Las fiebres reumáticas es una enfermedad inflamatoria que afecta al tejido conectivo de diversas zonas del cuerpo humano (piel, corazón, articulaciones ...)y la glomerulonefritis aguda es una inflamación del riñón que afecta a los glomérulos renales.

REACTIVOS 
LÁTEX : Suspensión de partículas de látex cubiertas con SLO, pH  8.2
CONTROL + : Suero humano con una concentración de ASO >200ul/ml
CONTROL - : Suero animal +

PROCEDIMIENTO
Nosotros solo hacemos el método semicuantitativo
  • Atemperamos los reactivos y las muestras a temperatura ambiente. La sensibilidad del ensayo disminuye a temperaturas bajas.
  •  Hacemos control + y -, depositanto 50ul de muestra y añadiendo una gota de cada uno de los controles positivo y negativo, sobre los círculos de una tarjeta

  • Mezclamos con el reactivo ASO-Látex vigorosamente con un palillo, procurando extender la mezcal por toda la superficie interior del circulo. Tenemos la precaución de usar diferentes palillos para cada pocillo. 
  • Para hacer el método semicuantitativo, añadimos 50ul en cada pocillo para realizar diluciones dobles de la muestra.
  • Añadimos 50ul de solución salina fisiológica, añadimos la muestra de manera homogénea con la solución salina, intentando que no se formen demasiadas burbujas. Cogemos de este primer pocillo y pasamos al siguiente, así sucesivamente con todos los pocillos 
  • Añadimos una gota de ASO-Látex y removemos bien con los palillos
  • Observamos para determinar la titulación. En nuestra practica llegamos hasta la segunda. Titulación = 2 
LECTURA E INTERPRETACIÓN
El examen macroscópico determina la presencia o ausencia de aglutinación. La presencia de aglutinación indica una concentración de ASO igual o superior a 200ul/ml

CALCULOS 
La concentración aproximada de ASO en la muestra del paciente se obtiene aplicando la siguiente formula:   200 x titulo de ASO = ul/ml
200 x 2 = 400ul/ml